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適用于光鏡檢查的常規切片的制備
通過活檢所獲取得的小腸粘膜組織對于診斷的價值,直接
取決于組織保存的狀況及標本的進一步妥善處理。腸.匕皮細胞
很快就會發生自溶性改變,因此,必需盡快對標本予以固定。人
們通常采用4%一10%的甲醛溶液對標本進行固定,而Bouin 固
定液(巧份飽和的苦味酸、5份甲醛及1份冰醋酸)的固定效果
要優于甲醛溶液 .其固定所需時間為2一24小時,
然后必需將被固定的組織置于80%酒精內蕩洗至完全脫色為止。
固定后的組織,因平滑肌(粘膜肌)的收縮大于其他組織(粘膜),
使活檢組織像刺m一樣卷起,很難確定標本的方向。為了不影
響診斷,應盡可能垂直地對標本進行切片。標本脫水后,用石蠟
對組織進行包埋時,應盡可能使標本的切面與粘膜絨毛及腺體
的排列方向保持平行。切片時,應將活檢標本每隔一定厚度切
上一片.共切24-32片。標本的標準染色方法為:素木蘇一伊
紅染色、PAS染色和Mas son-Goldner(或V. Gieson)染色。是否
還需要進行其他各種染色,應根據各病例的具體情況而定。在
某些情況下,為了證實中性脂肪和/或類脂的存在,還需要作冰
凍切片檢查。總之,應當避免將小腸粘膜活檢的標本分成幾份
進行各種不同的組織學方法的檢查。
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